| Rev. peru. biol.
Vol. 8 Nº 1 2001
© Facultad de Ciencias Biológicas UNMSM |
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MARCAS RADULARES PRODUCIDAS POR
GASTERÓPODOS PASTOREADORES DEL INTERMAREAL ROCOSO
Yván Reyes T.1; César
Córdova C.1; Leonardo Romero C.2 y Carlos Paredes Q.3
Resumen.-
Utilizando superficies artificiales, se pudo obtener marcas radulares de cuatro especies
de gasterópodos pastoreadores comunes en las orillas rocosas de la Bahía de Ancón. En
el presente trabajo se muestra las marcas radulares obtenidas en el laboratorio, del
tróquido Tegula atra (Lesson, 1830), el fisurélido Fissurella peruviana
(Lamarck, 1822); el lótido Lottia ceciliana (Orbigny, 1841) y el litorínido Nodilittorina
peruviana (Lamarck, 1822), dejadas sobre discos de cera dental. Además, se describe
el tipo radular de cada especie para relacionarla con la marca producida.
Palabras clave: Pastoreo, gasterópodos, herbivoría, intermareal, cera dental,
rádula.
Abstract.-
We had used artificial surfaces to examine the radular marks of four common grazing
gastropods from Ancon Bay. In this work we show radular marks on dental wax surface of the
trochid Tegula atra (Lesson, 1830), the fissurellid Fissurella peruviana
Lamarck, 1822, the lottid Lottia ceciliana (Orbigny, 1841) and the littorinid Nodilittorina
peruviana (Lamarck, 1822). In addition, the radular type is described to each species
to relate it to the produced mark.
Key words: Grazing, gastropods, herbivory, intertidal, dental wax, radula.
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Introducción.-
Los moluscos herbívoros que habitan las orillas rocosas marinas tienen una influencia
importante en las poblaciones y comunidades intermareales y submareales (Branch y Moreno,
1994; Santelices et al., 1986). De ellos, los gasterópodos pastoreadores causan efectos
en la microflora epilítica (diatomeas, algas azul-verdosas, esporas, algas filamentosas
microscópicas y plántulas de macroalgas) (Nicotri, 1977). Además, cabe mencionar que
algunos herbívoros están involucrados en los procesos de dispersión de propágulos de
algas (Santelices, 1990). Los gasterópodos pastoreadores presentan diferentes estrategias
y preferencias en su alimentación, las que dependen, entre otras cosas, de su morfología
radular. Así, aquellos con rádula ripidoglosa o taenioglosa tienden a preferir en su
dieta algas microscópicas y filamentosas; mientras que los poseedores de rádula
docoglosa, además de preferir algas microscópicas, también consumen algunas algas
coriáceas (Steneck y Watling, l982). Thompson et al. (1997) describieron una metodología
que emplea discos de cera dental, incrustados en rocas, para obtener marcas producto del
raspado de la rádula y determinar patrones espaciales y temporales de la actividad de
pastoreo de moluscos. Dicha técnica también fue utilizada por Forrest et al. (2001) para
propósitos similares. El objetivo del presente trabajo fue aplicar esta metodología, con
algunas modificaciones, para obtener en laboratorio marcas distintivas de la rádula de
cuatro especies de gasterópodos de significativa abundancia relativa en la costa central
del Perú: el tróquido Tegula atra (Lesson, 1830), el fisurélido Fissurella
peruviana Lamarck, 1822; el lótido Lottia ceciliana (Orbigny, 1841) y el
litorínido Nodilittorina peruviana (Lamarck, 1822); y estudiar su relación con
la estructura de la rádula. Este trabajo preliminar constituye una base para futuros
estudios de campo sobre monitoreo de la actividad pastoreadora de gasterópodos del
intermareal.
Material y Métodos.-
OBTENCIÓN DE RASPADOS EN LABORATORIO:
Se seleccionó como sustrato cuatro rocas graníticas con un volumen aproximado de 2000 cm3,
cubiertas de algas filamentosas y costrosas del intermareal de la Bahía de Ancón, Lima.
Éstas se trasladaron al laboratorio envueltas en papel absorbente humedecido en agua de
mar y dentro de una cámara de aislación térmica a 8 °C. En el laboratorio se eliminó
la fauna presente, y con un taladro de mesa, con broca de 1,6 cm de diámetro, se hicieron
10 hoyos de 0,5 cm de profundidad distribuidos regularmente en los sustratos. Utilizando
masilla epóxica se definió mejor la profundidad, forma circular y el diámetro (1,6 cm)
de los hoyos, procurando que la superficie quede plana con respecto al sustrato. Luego
estos se aclimataron por separado en acuarios, con aireación continua, fotoperiodo 8:16
(luz/oscuridad) y temperatura 30:28 °C (día /noche), para cada una de las especies de
moluscos.
Los discos de cera se obtuvieron rellenando anillos de PVC (tubo para agua caliente) de
1,6 cm de diámetro y 0,5 cm de altura, los cuales se colocaron sobre una superficie de
vidrio previamente limpiada con glicerina. Para el llenado de los anillos se calentó cera
dental blanca de incrustación en baño maría (90 °C), hasta quedar completamente
líquida; se vertió la cera dentro de los anillos y se la dejó enfriar hasta que
recuperó su dureza. Luego se separaron los discos del vidrio. Para la parte experimental
se utilizaron aquellos discos cuya superficie que estuvo en contacto con el vidrio
estuviese completamente limpia, plana y sin marcas.
Se recolectaron 10 individuos de Tegula atra, Fissurella peruviana, Lottia ceciliana y
Nodilittorina peruviana; y se trasladaron al laboratorio envueltos en papel toalla
humedecido dentro de una cámara de aislación térmica a 8 °C. En el laboratorio se
colocaron en acuarios con aireación continua para su aclimatación.
La obtención de raspados se hizo en acuarios, por separado para las cuatro especies,
colocándose en cada una de ellos una roca con 10 discos de cera y 10 individuos.
Diariamente los discos fueron retirados y revisados hasta observar raspados de la rádula
de los moluscos. La revisión se realizó bajo el estereoscopio, coloreando la superficie
del disco con azul de metileno, a fin de contrastar los raspados y estos aparezcan más
nítidos.
MORFOLOGÍA DE LA RÁDULA:
Las rádulas se sumergieron en una solución de hipoclorito de sodio al 1%, hasta su
aclaramiento, se enjuagaron en agua destilada y se conservaron en alcohol al 60%. Para la
obtención de micrografías en Microscopio Electrónico, las muestras fueron enviadas a la
Universidad de Concepción, Chile. Allí se fijaron en glutaraldehido 2,5% en tampón
cacodilato de sodio 0,1 M, se lavaron en tampón cacodilato de sodio 0,1 M y se
postfijaron en tetróxido de osmio al 1% en tampón cacodilato de sodio. Seguidamente las
rádulas se deshidrataron en acetona de 30, 50, 70, 80, 90 y 100% por 15 minutos cada uno.
Luego fueron secadas con el método de punto crítico (anhidrido carbónico líquido) y
pegadas al portamuestra con pasta de plata. La muestra fue sombreada con un baño de oro
de un espesor aproximado de 0,05 µ (Anderson, 1951) y observada en un Microscopio
Electrónico de Barrido AUTOSCAN-ETEC.
Resultados.-
RASPADOS OBTENIDOS EN EL LABORATORIO:
Producto del desplazamiento aleatorio durante la actividad de pastoreo sobre las rocas, se
lograron registrar cuatro tipos diferentes de raspados (Fig. 1), conformados por grupos de
marcas alargadas y paralelas, los cuales se distinguieron por su forma, tamaño y
disposición.
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Fig. 1:
Esquema del patrón de marcas producidas por los raspados sobre los diascos de cera
central. A) Tegula atra; B) Fissurella peruviana; C) Lottia
ceciliana; D) Nodilittorina peruviana. Las flechas indican la posible
dirección que siguió el molusco al realizar los raspados. Barra = 500 m. |
T. atra (Fig. 1.A). Raspados con
un ancho aproximado de 400 µ y conformados por grupos de 4-10 marcas paralelas, en forma
de arco, delgadas y de extremos ahusados, con aproximadamente 30 µ de grosor,
encontrándose además marcas más pequeñas de manera intercalada.
F. peruviana (Fig. 1.B). Raspados con un ancho aproximado de 280 µ y conformados
por grupos de 4-8 marcas paralelas, con forma de arco, gruesas, cortas y de extremos
ahusados, con aproximadamente 40 µ de grosor, encontrándose además marcas más
pequeñas de manera intercalada.
L. ceciliana (Fig. 1.C). Raspados con un ancho aproximado de 150 µ y conformados
por grupos de 4 marcas paralelas, alargadas, rectas y con extremos ahusados, con
aproximadamente 30 µ de grosor. El par de marcas centrales suele ser más largo con
aproximadamente 400 µ de longitud.
N. peruviana (Fig. 1.D). Raspados formados por dos series de marcas oblicuas
superficiales. Cada raspado con aproximadamente 400 µ de longitud y 100 µ de ancho. La
longitud de las marcas disminuye en la dirección de desplazamiento.
Los raspados de T. atra y F. peruviana presentaron semejanzas. En ambas
se notaba una curvatura similar, pero en F. peruviana las marcas fueron más
pequeñas y más gruesas. Los raspados de L. ceciliana se presentaron a manera de
arañazos. N. peruviana presentó una forma muy particular de raspado, formada
por líneas diagonales casi paralelas y en dos hileras.
MORFOLOGÍA DE LA RÁDULA:
T. atra (Fig. 2.A) presenta rádula ripidoglosa. Cada hilera transversal consta
de un gran diente raquidial, flanqueado a ambos lados por 5 dientes laterales y numerosos
dientes marginales. El raquidial está ligeramente aplanado, con la mitad superior
ensanchada en forma de media luna; además presenta un delgado segmento en el borde
superior. Los laterales con la mitad superior curvada, cuyo ancho aumenta hacia los más
laterales, y dentículos en el borde externo. Los dientes marginales son largos, delgados
y curvados, decreciendo en tamaño hacia el margen, y presentan el borde externo serrado.
F. peruviana (Fig. 2.B) presenta rádula ripidoglosa. Cada hilera transversal
consta de un diente raquidial flanqueado a ambos lados por 5 dientes laterales y numerosos
dientes marginales (menos que en T. atra). El raquidial y los laterales son
idénticos, con la porción superior curvada; el quinto lateral es considerablemente más
grande, con la mitad superior curvada y 4 cúspides, de las cuales la segunda hacia el
exterior es más grande. Los dientes marginales son largos y delgados, con la porción
basal muy angosta y la mitad superior curvada; además el borde superior es curvado y
ligeramente serrado.
L. ceciliana (Fig. 2.C) presenta rádula docoglosa. En cada hilera transversal
posee 3 pares de dientes laterales y un par de marginales (uncini), no hay raquidial. Los
dientes laterales son grandes y curvados, con una amplia porción basal y el borde
superior agudo. Los dientes del primer par lateral son los más largos y centrales, unidos
por una porción central. Los dientes del segundo par son más cortos y están ubicados
por debajo del primer par. El tercer par es más pequeño y de posición lateral en
relación al segundo par. Los dientes marginales son curvados, aplanados y muy pequeños.
N. peruviana (Fig. 2.D) presenta rádula taenioglosa, donde cada hilera
transversal consta de un diente raquidial flanqueado a ambos lados por 2 dientes laterales
y un marginal. El raquidial es pequeño y ligeramente curvado, con la porción basal
amplia y 3 cúspides de las cuales la central es la más grande. Los dientes laterales son
gruesos, con la mitad superior curvada y ancha, con 3 cúspides, siendo mayor la central.
El primer par de laterales presenta la cúspide central de forma rectangular. Los dientes
marginales son gruesos, en forma de garra, con la mitad superior curvada y 9 cúspides
similares; además presenta procesos basales, lateralmente y a manera de alas, siendo más
grande la del borde externo.
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Fig. 2: Micrografías
al Microscopio Electrónico de Barrido de la rádula (mayúscula) y esquemas de las marcas
producidas sobre los discos de cera dental (minúsculas). A y a) Tegula atra; B y
b) Fissurella peruviana; C y c) Lottia ceciliana; D y d) Nodilittorina
peruviana. DR, diente raquidial; DL, diente lateral; DM, diente marginal. Barra = 100
m. |
Discusión.-
El patrón de marcas en forma de arco obtenidos para T. atra y F.
peruviana coinciden con aquellas obtenidas por Thompson et al. (1997) para especies
con rádula ripidoglosa (Calliostoma zizyphinum y Gibbula spp.). Por otro lado, Steneck y
Watling (1982) mencionan que las rádulas ripidoglosas funcionan a manera de escoba por la
presencia de los numerosos dientes marginales en cada hilera, los cuales al extenderse
amplían el área de acción, dando como resultado numerosos puntos de contacto entre la
rádula y el sustrato. En T. atra y F. peruviana el ancho de la rádula
es mayor que el de los raspados, lo que nos indica que sólo una porción de la hilera de
dientes penetra el sustrato. El ancho del raspado es menor en F. peruviana, pero
el grosor de las marcas es mayor, lo que podría deberse a una menor área de contacto y a
una mayor presión ejercida por los dientes sobre la cera.
Thompson et al. (1997) y Forrest et al. (2001) muestran que el patrón de raspado de
rádulas docoglosas de gasterópodos patélidos consiste en arañazos irregulares sobre la
cera dental. Para el caso del lótido L. ceciliana los raspados en forma de
arañazos son mucho más regulares, mostrando 4 marcas en cada uno, probablemente por la
acción de las cúspides del primer y segundo par de dientes laterales. La rádula de L.
ceciliana presenta sólo 3 pares de dientes laterales y un par de marginales de
tamaño reducido (Gallosa, 1975), mientras que el patélido P. vulgata presenta
un número mayor de laterales y marginales (Hyman, 1967; Ridgway et al., 1998), lo cual
justificaría la diferencia de marcas entre estas dos familias.
El patrón de raspado para N. peruviana, gasterópodo con rádula taenioglosa,
consiste en dos series de marcas oblicuas superficiales producidas posiblemente cuando los
dientes convergen hacia el centro durante la retracción (Steneck y Watling, l982).
Thompson et al. (1997) y Forrest et al. (2001) muestran adicionalmente marcas paralelas
presentes en los raspados de los litorínidos Littorina obtusata y Bembicium
nanum respectivamente.
Consideramos que para una mejor descripción de las relaciones entre la forma de las
marcas producidas en los raspados y la estructura de la rádula quedan por determinar con
exactitud la forma de acción de la misma sobre la cera, así como la dirección que sigue
el molusco al realizar los raspados.
A pesar de la adaptación realizada a la técnica descrita por Thompson et al. (1997), se
logró obtener marcas distintivas de la rádula de cuatro especies de gasterópodos de
significativa abundancia relativa en la costa central del Perú.
AGRADECIMIENTOS:
Los autores agradecen el apoyo logístico brindado por el grupo de investigación DePSEA,
quienes además facilitaron la realización de un ensayo de campo. Agradecemos también a
los integrantes del Laboratorio de Microscopía Electrónica, Dirección de Investigación
de la Universidad de Concepción, quienes de manera desinteresada se encargaron de todo lo
relacionado al procesamiento de las muestras para Microscopía Electrónica de Barrido y
obtención de micrografías.
Bibliografía
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1. Laboratorio de Ficología Marina. Facultad de Ciencias
Biológicas. Universidad Nacional Mayor de San Marcos. Apartado 14-002. Lima, Perú.
e-mail: d190073@unmsm.edu.pe
2. Servicio de Consultoría en Áreas Marinas. FCB. UNMSM.
3. Laboratorio de Invertebrados Acuáticos. FCB. UNMSM.
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