Marcelo Rojas Cb, Ismelda Lobato Ac y María Montalvo Vc
ABSTRACT With the aim of obtainen the diagnosis in situ of the parasites in small mixt family herd conform by alpacas, llamas and sheep. The complementary methodology has been use: fecal examination, clinical observation, serology and analisis of the feed quality inspection records. The methodology was found to be eficient and with minimun cost, with prevalence: Moniezia (3 a 30%), Camelostrongylus, Trichostrongylus, Ostertagia, Cooperia (10 a 92%), Nematodirus spathiger (11 a 15%), Nematodirus lamae (2 a 27%), Lamanema chavezi (13 a 52%), Capillaria (5%), Sarcoptes (5 a 13%), Trombicula (8 a 10%) Amblyomma (4 a 23%), Microthoracius (11 a 38%), Melophagus (54%), Cryptosporidium (16 a 20%) Toxoplasma (24 a 47%) confiscation of carcasas forSarcocystis (3%). It was concluded that the methodololy allows to claryfy and to quantify with precision the parasitary specificity in mixt family herds an also points the relative amount of the gastrointestinal nematodes. Key words: alpaca, llama, sheep, mixt family herds, prevalence, parasitary specificity, helminths arthropods, protozoos, study methodology.
RESUMEN Con el objeto de obtener un diagnóstico situacional del conjunto parasitario en pequeños rebaños mixtos familiares conformados por alpacas, llamas y ovinos, se ha usado la metodología complementaria: examen fecal, observación clínica, serología, y análisis de archivos de inspección de calidad de alimentos. Se encontró que la metodología es altamente expeditiva y económica; llegándose a señalar cifras de prevalencia para la siguiente gama de parásitos: Moniezia (3 a 30%), Camelostrongylus, Trichostrongylus, Ostertagia, Cooperia (10 a 92%), Nematodirus spathiger (11 a 15%), Nematodirus lamae (2 a 27%), Lamanema chavezi (13 a 52%), Capillaria (5%), Sarcoptes (5 a 13%), Trombicula (8 a 10%) Amblyomma (4 a 23%), Microthoracius (11 a 38%), Melophagus (54%), Cryptosporidium (16 a 20%) Toxoplasma (24 a 47%) y decomisos de carcasas por Sarcocystis (3 %). Se concluye que la metodología permite evidenciar y precisar la especificidad parasitaria en hatos de ganadería mixta; así como señalar la cuantía relativa de los nematodos gastrointestinales. Palabras clave: alpaca, llama, ovino, rebaño mixto familiar, prevalencia, especificidad parasitaria, helmintos, artrópodos, protozoos, metodología de estudio.
La dinámica de la población parasitaria en los animales domésticos, en principio esta sujeta a la influencia sistémica de una serie de factores concurrentes, en lo que ahora se concibe como ecológica del parasitismo y antes como triada epidemiológica: el parásito mismo, el hospedero y el ambiente. Tal dinámica se, evidencia como fluctuaciones u ondas de aumentos y disminuciones a lo largo de la vida productiva de¡ animal, o en términos de manejo ganadero, a lo largo de¡ año calendario. La dinámica de la fauna parasitaria en el rebaño de un solo tipo de hospedero, responde a su propio espectro de parásitos y su correspondiente identidad ecológica; pero, si el rebaño esta compuesto por varios tipos de hospederos, la dinámica de la fauna parasitaria es distinta, porque el espectro parasitario es diferente y por lo tanto lo es también la ecología, luego debe tener otra forma de visualizar e interpretar la dinámica de la fauna parasitaria en el rebaño mixto. Parece que no hay información que involucre esta forma de apreciar el problema del parasitismo en la ganadería del país, carencia que adquiere relevancia si se debe interpretar a más del 70% del capital pecuario nacional, pertenecientes a los pequeños criadores. Por lo tanto, los objetivos de este artículo es, por un lado, presentar y discutir la prevalencia de la fauna parasitaria presente en un momento dado, en pequeños rebaños familiares mixtos compuestos por alpacas, llamas y ovinos; y por otro, mostrar una metodología relativamente sencilla y barata que permita analizar en forma casi integral el diagnóstico situacional la gama de parásitos de cualesquiera hatos ganaderos mixtos regionales.
MATERIAL Y METODOS A finales del verano de 1987, se utilizó 120 alpacas, 160 llamas y 40 ovinos de distintos estratos etarios, criados conjuntamente en varios pequeños rebaños familiares mixtos del altiplano andino aimara chileno (entre 18 y 19º de latitud sur y 69 y 70º de longitud), en una altitud de 3 800 a 4 500 m sobre el nivel del mar. El clima es desierto marginal de altura y de estepa de altura (Köeppen), con temperatura ambiental promedio máxima entre 8 y 18 ºC y la promedio mínima entre -0.1 y -10 ºC; y una precipitación pluvial entre 175 a 394 mm anuales, registrados entre Diciembre a Marzo, con máximos sistemáticos en Enero y Febrero. En la metodología, se uso el examen fecal complementario: 1) cualitativo (flotación) para averiguar la prevalencia de: Moniezzia, nematodos, Eimeria y Cryptosporidium (este último en animales menores de 7 días de edad, mediante coloración con Z¡ehl-Neelsen modificado;1 y 2) cuantitativo (MacMaster modificado) en todas las muestras que resultaron positivos con el método anterior, para visualizar la cuantía relativa del grado de nematodiasis gastroentérica. En suero sanguíneo de animales de 1 a 3 de edad se estudió Toxoplasma, mediante la micro-hemaglutinación indirecta con valor diagnóstico 1/16. A través de la observación clínica se investigó los ectoparásitos artrópodos, y mediante la inspección de calidad de alimentos en Camal, Sarcocystis y Thysaniezia giardi.
RESULTADOS Y DISCUSION PREVALENCIA Y ESPECIFICIDAD PARASITARIA Parásitos Gastroentéricos Los resultados se muestran en el Cuadro 1 y Fig. 1, 2 y 3 en los que para el caso de los nematodos, Moniezia e Eimeria, se ha obtenido mediante el método de flotación; que permite diferenciar sin ninguna dificultad: Nematodirus spathiger, Nematodirus lamae, Lamanema chavezzi, Capillaria, Moniezia expanza, Eimeria sp. y huevos "Tipo strongylus" (conformados por: Camelostrongylus mentulatus, Ostertagia trifurcata, Trichostrongylus colubriformis y Cooperia oncophora) cuyas identidades son inferencia de los parásitos identificados en animales de la zona, beneficiados en el Carnal regional. En el caso de las alpacas se puede apreciar que los más frecuentes son los "Tipo strongylus" y que la prevalencia aumenta con la edad de los animales; luego le sigue L. chavezzi, N. spathiger y N. lamae. Aquí se debe agregar que en muestras de solamente animales adultos se encontró hasta 5% de prevalencia de Capillaria sp. La Moniezia y las Eimeria, solamente se halló en animales jóvenes. Para el caso de las Eimeria en alpacas, Rojas2 cita que la prevalencia se inicia a las dos semanas de edad alcanzando después su pico de alrededor de 95%, a los 135 días de edad. En las llamas el patrón es básicamente el mismo, con una evidente diferencia en el caso de L. chavezi. Las cifras menores se debe explicar a que las llamas pastan en los lugares más áridos, los tolares, y las alpacas y los ovinos usan los bofedales. En los ovinos se puede apreciar la ostensible ausencia de N. lamae y L. chavezi, lo que demuestra la especificidad parasitaria para con los camélidos; característica que también lo cita Núñez3 en un estudio de crianza conjunta de alpacas y ovinos. Tal fenómeno visto desde la perspectiva del control de estos nematodos, significa que los ovinos actúan como excelentes controladores biológicos de dichos nematodos. Si bien las Moniezia son comunes a los tres hospederos, no es así en el caso de las Eímeria, que son altamente específicas (en camélidos se identificó: E. alpacae, E. lamae, E. punoensis y E. macusaniensis; en ovinos: E. intrincata, E. arloingi y otras 4 o 5 especies). En otro lote especial de muestras fecales de crías menores de Mías señaló Cryptosporidium parvum, en 16.7% de 18 alpacas, y en 20.0% de 5 llamas;4 no habiéndose investigado en las muestras fecales de los otros estratos etarios.
Toxoplasma gondii En muestras de 60 alpacas -se halló 47 y 24 % de reactores en machos y hembras, respectivamente;6 con metodología y en ecología similar-, notifican cifras entre 32 a 62.5%. En 32 llamas se encontró 46 y 26% en machos y hembras, respectivamente;' Hay una clara evidencia de mayor seroreactividad en machos. También se estudió 11 vicuñas hembras, hallándose 27.3% de reactoras. En general, el 27.3 % de los reactores tuvieron títulos de 1/16; el 48.3%, 1/32; el 24.1%, 1/64, y el 6.9% 1/128.
Parásitos artrópodos En el mismo Cuadro 1 y a través de los distintos grupos etarios, se puede visualizar las prevalencias de: Trombicula, Sarcoptes scabiei var. aucheniae, Amblyomma parvitarsum, Microthoracius praelongyceps y Melophagus o vinus. De tales resultados se debe extraer también que Sarcoptes, Amblyomma y Microthoracius son altamente específicos para los camélidos, mientras que Melophagus lo es para los ovinos. Estas son otras dos claras evidencias de especificidad parasitaria, especialmente útil para una cabal comprensión de la sarna. El Trombicula sólo se observa en animales muy jóvenes.
ªHay que agregar:sarcocystis,
Cryptosporidium y Capillaria sp., cuyas cifras se hallan en el texto del artículo.
Sarcocystis auchenicanis y Lamanema chavezi La presencia relativa de estos parásitos se estudió en los archivos de inspección de calidad de alimentos de 14 345 carcasas de llamas beneficiadas en el Camal regional entre 1985-86. El protozoo ocasionó alrededor de 3% de decomisos de canales seriamente afectados y por lo tanto indeseables para la comercialización directa; en tanto que el nematodo Lamanema chavezi ocasionó 18.6% de decomiso de hígados seriamente afectados igualmente indeseables para la comercialización.5 En estudio similar en alpacas 1 citan 9.0% para Sarcocystis y 12.0% para Lamanema.
CANTIDAD RELATIVA DE NEMATODOS GASTROINTESTINALES Esta información es producto del método cuantitativo de McMaster, que mediante el cálculo del número de huevos por gramo de heces intenta señalar la cantidad relativa de parásitos existentes en el animal. En tal sentido en el Cuadro 1, a través de la columna "Total HPGH" la cuantía muestra una tendencia al incremento en el sentido de la mayoría etaria, con mayores cifras en alpacas que en llamas. Se debe entender que dicho "Total" es la suma de las otras columnas "HPGH". En la Fig. 7 se muestra la tendencia de las cuantías. En el caso de las alpacas, los "tipo strongylus" son más numerosos que en las llamas; pocos N. spathiger en alpacas y no detectados en llamas, y similar interpretación para N. lamae. En el Cuadro se usa "cs" para señalar que los animales tienen el parásito, pero en tal cantidad que, el número de huevos presentes en las heces son pocos que la metodología de McMaster no los puede detectar. En lo referente a L. chavezi, se nota que la cuantía es mayor con respecto a los demás parásitos, y por lo tanto, desde el punto de vista específico, es el parásito más frecuente y más importante. Utilizando la información de la columna "Total HPGH" para comparar con otros estudios, en los momentos estacionales correspondientes (verano), el estudio en las alpacas muestra que el número de huevos por gramo de heces (HPGH) está alrededor de 200, cifra que es concordante con otros estudios,3,9,10 mientras que en el caso de las llamas la cifra esta alrededor de 100, en ambos casos aprovisionados principalmente por los "tipo strongylus" y L. chavezi. Entonces hay mayor parasitismo en alpacas que en las llamas, concordante con el ámbito de pastoreo de ellas, los bofedales para las alpacas, y los tolares (partes altas) para las llamas.
CONCLUSIONES Los resultados obtenidos en el estudio permiten concluir: 1) El conjunto de métodos utilizados (examen fecal, observación clínica, serología, y análisis de archivos de inspección de calidad de alimentos) permiten obtener un diagnóstico situacional estático global del aspecto parasitario de rebaño ganadero. 2) La combinación metodológica del examen fecal cualitativo (flotación) y cuantitativo (McMaster), resulta expeditivo para el diagnóstico situacional de helmintos y protozoos gastroentéricos en términos de prevalencia por estratos etarios, y cuantía relativa de nematodos parásitos. 3) La metodología permite evidenciar y precisar la identidad de la especificidad parasitaria de los parásitos en rebaños ganaderos mixtos.
LITERATURA CITADA 1. García LS, Bruckner DA, Brewer TC, Shimzu RY. Techniques for the recovery and identification of Cryptosporidium o ocysts from stool specimens. J Clin Microbiol 1983; 18: 185-190. 2. Rojas CM. Parasitismo de los rumiantes domésticos quimioterapia, prevención y modelos para su aprendizaje. Lima: Maijosa, 1990: 311. 3. Núñez LA, Rojas CM. In: Rojas CM. Parasitismo de los rumiantes domésticos quimioterapia, prevención y modelos para su aprendizaje. Lima: Maijosa, 1990:193. 4. Rojas CM, Lobato Al, Montalvo VM. Cryptosporidium en camélidos sudamericanos. 112 Cong. Panam. Ciencias Vet. Perú: Lima, 1988: Res. F.2.6. 5. Rojas CM. Relación Final. FAO: TCP/CHI/ 6651 (A). Roma: Organización de las Naciones Unidas para la Agricultura y la Alimentación, 1987: 14. 6. Rojas CM, Lobato AI, Montalvo VM. Prevalencia de Toxoplasma gondii en camélidos sudamericanos. Resúm 124 Reunión Científica Anu Asoc Peruana Prod Anim. Perú: Lima, 1989: 97. 7. Leguía PG, Samamé BH, Guerrero CA, Rojas CM, Núñez LA. Prevalencia de anticuerpos contra Toxoplasma gondii en alpacas. Rev Camélidos Sudamer IVITA (Perú) 1988; (6): 19-22. 8. Alva MJ, Rojas M, Núñez A. Decomisos por parásitos y su importancia económica en alpacas (Lama pacos). Rev 1 nv Pec IVITA (Perú) 1980;5(1): 61-,63. 9. Rojas CM. Parasitismo de los rumiantes domésticos quimioterapia, prevención y modelos para su aprendizaje. Lima: Maijosa, 1990:186. 10. Rojas CM, Núnez LA, Alva MJ. Análisis longitudinal de la gastroenteritis nematódica de las alpacas. Rev Camélidos Sudamer IVITA (Perú) 1987; (5): 28-34.
|
|||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
