DETERMINACIÓN DE SUSCEPTIBILIDAD DE
Pseudomonas aeruginosa COMPARANDO DOS
MÉTODOS: MICROSKAN VERSUS DILUCION EN DISCO
KIRBY BAUER
Dr. Eduardo Celiz*
RESUMEN
Objetivo: Comparar la certeza del sistema Vitek-Microscan con la de Test de difusión de
disco para la determinación de la susceptibilidad de Pseudomonas aeruginosa a Cefepime.
Modelo de estudio: Abierto, comparativo y de corte transversal.
Métodos: Se colectaron cepas de Pseudomonas aeruginosa aisladas de pacientes atendidos en
servicios hospitalarios del Hospital Guillermo Almenara de la Seguridad Social del Perú.
Las cepas aisladas fueron identificadas de acuerdo a las recomendaciones del NCCLS. Se
determinó la susceptibilidad mediante la Difusión en Disco de Kirby Bauer (MDDKB) o del
CIM mediante el método de Microskan (MS) sistema Vitek.
Resultados: De 80 cepas de Pseudomonas aeruginosa aisladas 73 fueron evaluadas por MS y 80
por el método MDDKEI. 48 (65.75%) de las cepas evaluadas por MS fueron reportadas como
resistentes1 mientras que solo 1 de las 80 cepas evaluadas por el método MDDKB fue
reportada como resistente (P=0.00000001).
En las 73 cepas evaluadas por ambos métodos, se detectó 49 (67.1%) datos discordantes:
48 cepas sensibles al MDDKB fueron reportadas como resistentes por el método de MS y una
cepa reportada como resistente al método de MDDKB fue reportada como sensible al método
de MS.
SUMMARY
Objetive: Validation of the Vitek-Microskan system in comparison with the disk diffusion
test for the determination of the susceptibility of Pseudomonas aeruginosa to cefepime.
Method: this was an open, comparative and transversal study. We collected strains of
Pseudomonas aeruginosa isolated from patients of different areas at the hospital Guillermo
Almenara of the peruvian social security. Isolated strains were indentified according to
the NCCLS recommendations. Susceptibility was determined by Kirby-Bauer Diffusion Disk
test (MDDKB) or by MIC through the Microskan Method (MS) Vitek system.
Results: From 80 isolated strains of Pseudomonas aeruginosa 73 were evaluated by MS and 80
by the MDDKB method. 48(65.75%.) strains evaluated for both methods, were detected 49
(67.1 %) discordant data; 48 strains sensitive by MDDKB were reported as resistant by the
MS method and one strain reported resistant by MDDKB was reported as sensitive by MS.
*jefe del Departamento de Microbiología Hospital Nacional Guillermo Almenara Lima, Perú
INTRODUCCIÓN
La aparición de los antibióticos en la terapéutica médica en los últimos 60 años ha
permitido curar infecciones que antiguamente tenían 100% de mortalidad. Sin embargo, las
infecciones bacterianas aún permanecen como una de las principales causas de
morbi-mortalidad a nivel mundial. Un problema creciente y preocupante en los últimos
años, es el desarrollo de resistencia bacteriana a los antibióticos, lo cual ha obligado
a participar en una adecuada vigilancia antibiótica, una racionalización de su uso y en
la generación de nuevas moléculas de antibióticos que tengan mayor actividad
antibacteriana y mayor estabilidad contra la resistencia.
El aislamiento del agente causal por cultivo y el conocimiento de la susceptibilidad del
mismo, es un proceso que toma usualmente varios días, lo que implica que en aquellos
pacientes en riesgo de muerte o complicaciones, el médico se ve obligado a seleccionar un
tratamiento, sin esperar el resultado del laboratorio. En estos casos el médico basa su
decisión en datos clínicos y epidemiológicos entre los que se encuentra la estadística
bacteriológica. Dicha estadística tiene en cuenta los agentes que se aíslan con mayor
frecuencia en el área corporal infectada y la susceptibilidad de dicha bacteria en el
lugar donde se adquirió. Para la determinación de la susceptibilidad bacteriana se
pueden utilizar diversos métodos, todos con ventajas y limitaciones. En el Perú, en la
mayoría de los centros de diagnóstico hospitalarios y comunitarios, se emplea como
técnica para determinar la susceptibilidad antibiótica de una bacteria, el Método de
Difusión de Disco de Kirby Bauer (MDDKB), por ser un método de bajo costo y fácilmente
estandarizable, aunque su información sólo es cualitativa.
La determinación de la concentración inhibitoria máxima (CIM), por dilución en caldo
ó en Agar o por el método de E-test ha sido implementada en pocos centros debido a su
alto costo y a dificultades metodológicas. Recientemente se ha introducido métodos
automatizados para la determinación del CIM, entre ellos el Microscan (MS). Estos
métodos se basan en la detección por lectores ópticos de la turbidez que produce el
crecimiento bacteriano (Vitek), o por la lectura de los productos del metabolismo
bacteriano (WalkAway)1. Su ventaja es que pueden detectar más tempranamente el
crecimiento bacteriano y por ende la susceptibilidad del mismo. Sin embargo, algunos
problemas se vienen reportando en la literatura mundial. Entre ellas, se ha detectado
recientemente, fallas en la detección de resistencia a Cefepime de Pseudornonas
aeruginosa2,3.
El presente, es un estudio cuyo objetivo fue comparar la certeza en la determinación de
la susceptibilidad de Pseudomona aeruginosa a Cefepime del sistema de Microskan,
utilizando como método de control el clásico test de difusión en disco (MDDKB). El
diseño de estudio fue abierto, comparativo y de corte transversal.
MATERIAL Y MÉTODOS
Se recolectaron cepas de Pseudornonas aeruginosa de muestras remitidas al Servicio de
Microbiología del Hospital Guillermo Almenara de la Seguridad Social del Perú. Las
muestras fueron tomadas de pacientes con sospecha o demostración clínica de infección,
que fueron atendidos en los diferentes Servicios del hospital.
Las cepas aisladas fueron identificadas de acuerdo a las recomendaciones del Comité
Nacional para Estándares de Laboratorio Clínico (NCCLS)4-6. La determinación
de la susceptibilidad de Pseudomonas aeruginosa a Cefepime se realizó mediante la
Difusión en Disco de Kirby Bauer (Mddkb) o del CIM mediante el método de Microskan (MS)
sistema Vitek, siguiendo en ambos casos la metodología estándar (Tabla 1).
Se calculó estadísticamente un tamaño de muestra de 80 cepas que debían ser probadas
por cada método de determinación de susceptibilidad, asumiendo que el test de control
estándar tiene un éxito de 95% y la diferencia esperada entre las dos técnicas sea de
10, acorde con lo reportado en la literatura2,3,8.
| Tabla 1:
Rango de referencia de susceptibilidad según método de diagnóstico |
| MÉTODO |
RANGO DE REFERENCIA DE LOS TEST
DE SUSCEPTIBILIDAD |
| Sistema Microskan |
Sensible:
<= 8µg/mL
Intermedio: 16µg/mL
Resistente: >= 32µg/mL |
| Disco Kirby Bauer |
Sensible:
18 mm
Intermedio: 15 - 17mm
Resistente: 14 mm |
RESULTADOS
Desde Septiembre hasta Diciembre de 1999 se recolectaron un total de 80 cepas de los
diferentes Servicios del Hospital Guillermo Almenara del Seguro Social del Perú. la
distribución de los Servicios de donde fueron remitidas las muestras para aislamiento se
puede observar en la Tabla 2, al igual que las cepas de Pseudomonas aeruginosa aisladas de
fluidos corporales como sangre, secreción de heridas y orina fundamentalmente.
De las 80 cepas aisladas 73 fueron evaluadas por MS y 80 por el método MDDKB, 48 (65.75%)
de las cepas evaluadas por MS fueron reportadas como resistentes, mientras que solo 1 de
las 80 cepas evaluadas por el método MDDKB fue reportada como resistente (p =00000001).
Si se comparan únicamente las 73 cepas que fueron evaluadas por ambos métodos, se
detectaron un total de 49 de 73 (67.1 %) datos discordantes: 48 cepas sensibles al MDDKB
fueron reportadas como resistentes por el método de MS y una cepa reportada como
resistente al método de MDDKB fue reportada como sensible al método de MS.
| Tabla 2:
Distribución por área hospitalaria de toma de muestra o por fluido corporal de
procedencia de la muestra, de las 80 cepas de Pseudomonas aeruginosa evaluadas en el
estudio |
Fluido corporal
Secreción Bronquial o Esputo
Secreción de Herida o Piel
Orina
Sangre
Otros |
(%)
38.4
27.6
17.7
11.7
5.3 |
Area hospitalaria de toma de muestra
Medicina
Cirugía
UCI
Quemados
Pediatría
Otros |
(%)
37.4
28.6
14.3
7.7
5.5
6.5 |
DISCUSIÓN
El problema de resistencia bacteriana es de actualidad y trascendencia universal.
Enfermedades que causaban alta mortalidad cambiaron su curso histórico con la aparición
de los antibióticos. Sin embargo, luego de 6 décadas, factores como la habilidad de
supervivencia bacteriana y el mal uso de los antibióticos entre otros, han hecho que la
resistencia bacteriana aumente y se disemine en el ámbito mundial en los últimos años.
Esta situación obliga a mantener una vigilancia permanente de la progresión del
problema, para lo cual se han creado sistemas de vigilancia automatizados, estandarizados
e interconectados en redes internacionales, que permiten obtener información actualizada
día a día. Dado que aún no se cuenta con vacunas eficientes para el control de
infecciones bacterianas, la racionalización adecuada del uso antibióticos es de
necesidad vital, así como la generación de nuevas moléculas antibióticas, de amplio
espectro y con mayor estabilidad contra los mecanismos de resistencia. Entre ellas está
el Cefepime, una cefalosporina de cuarta generación de gran utilidad, que se emplea en el
tratamiento de infecciones moderadas a severas ocasionadas por bacterias agresivas, entre
las que se encuentra Pseudomonas aeruginosa.
Entre los métodos de diagnóstico utilizados en los sistemas de vigilancia bacteriana se
encuentra el método de lectura de la Concentración Inhibitoria Mínima (CIM) por el
Sistema de Microscan (MS) el cual es un sistema moderno pero de tecnología costosa.
Comparativamente con MS, un método simple y de uso cotidiano como el MDDKB tiene la
ventaja de ser menos costoso, la similitud de permitir una menor intervención del
operador en el proceso, pero la desventaja de proporcionar resultados únicamente
cualitativos, mas no cuantitativos1. Comparado con otros métodos utilizados en
la determinación del CIM, el sisema MS disminuye notablemente el volumen de material de
laboratorio requerido, lo tedioso del procedimiento, y la participación de la parte
operativa en el procesamiento de la muestra. Se debe adicionar como ventaja, el hecho de
colectar datos directamente en un terminal de computador, permitiendo que los programas
incorporados den reportes estadísticos inmediatos que pueden viajar a cualquier parte del
mundo por vía electrónica1,7.
Desafortunadamente, datos recientes han reportado fallas en el sistema de MS, tanto en el
sistema Vitek como en el Walkaway, sobretodo para la determinación de la susceptibilidad
de Pseudomonas aeruginosa para ciertos grupos de antibióticos, entre los que se encuentra
Cefepime2,3,8. Discordancias del orden de 15-25% han sido reportados por varios
investigadores, con tasas de error de 10 a 20% al momento de calificar cepas sensibles
como resistentes y de 5 a 10% al reportar cepas resistentes como sensibles2,3,8.
Diversos estudios muestran claramente que técnicas como la de determinación del CIM por
Microdilución en Caldo ó E-Test, tienen una mayor exactitud en la determinación de la
susceptibilidad de Pseudomonas aeruginosa a Cefepime2,3,8, como se confirma en
el presente estudio que muestra una tasa de error del Sistema de Microscan de 67.1 %.
Estos datos correlacionan con los resultados clínicos y el éxito del tratamiento con
Cefepime en el manejo de las infecciones moderadas a severas por Pseudomonas aeruginosa.
De ahí que diversos autores recomiendan, en caso que la bacteria aislada sea Pseudomonas
aeruginosa, que la determinación de la susceptibilidad se realice métodos convencionales
diferentes a Microscan, ó en su defecto se realice una confirmación de la
susceptibilidad obtenida por el método de Microscan por métodos tradicionales que
ofrecen una mayor seguridad en el resultado. Esta recomendación debe ser implementada en
todo laboratorio donde se cuente con el Sistema de Microscan para determinación del CIM,
a fin de dar una buena orientación al médico en la selección del tratamiento para su
paciente.
BIBLIOGRAFÍA
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Wayne, PA: NCCLS.
5. National Committee for Clinical Laboratory Standards (NCCLS) (1997b). Methods for
Dilutions Antimicrobial Susceptibility Test for Bacteria that Grow Aerobically: Approved
Standard M7-A4. 6 1h ed. Wayne, PA: NCCLS.
6. National Committee for Clinical Laboratory Standards (NCCLS) (1998). Performance
Standards for Antimicrobial Susceptibility Testing, 8th
International Supplement M 100 S8, Wayne, PA: NCCLS.
7. Ferraro MJ, Jorgensen JH: Instrument-based antibacterial susceptibility testing. In
Murray PR, Baron Ej, Pfaller MA et al (eda): Manual of Clinical Microbiology, Washington,
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8. Rittenhouse SF; Miller LA; Utrup LJ; Poupard JA. Evaluation of 500 gram negative
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Infect Dis -1996; 26 (1): 1-6.
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