A pesar de la alta frecuencia de endoscopías del tracto digestivo, la transmisión de infecciones durante estos procedimientos es baja, sin embargo las infecciones pueden ser severas e incluso letales.

La literatura revela un mínimo de 281 episodios de infecciones transmitidas por endoscopias del tracto digestivo. La mayoría de las infecciones ocurrieron antes de la adopción de "protocolos de limpieza y desinfección de endoscopios". Posteriormente a la introducción de esos "protocolos" solo se han documentado 28 casos de infección (con una incidencia de 1/1.8 x 10⁶); la excepción son los procedimientos de endoscopia biliar ya que estos transmiten infecciones en 1% de los procedimientos, con una mortalidad del 25% de los pacientes infectados. La relativa baja frecuencia de infecciones no debe darnos un sentido de falsa seguridad ya que en gran parte es explicada por la falta de protocolos que busquen detectar estas infecciones en forma rutinaria, por esta razón la mayoría de las infecciones no son reportadas al endoscopista.

El espectro de las infecciones transmitidas incluye bacterianas, micobacterianas, micóticas, parasitarias y virales. Los microorganismos más comunes han sido salmonella, pseudomonas, M. tuberculosis, trichospora, strongiloides, y virus de la hepatitis B.

La fuentes de infección durante las endoscopías han sido variadas e incluyen: a)la superficie del endoscopio, b) los canales de agua o aire, c) el canal de biopsia, d) el canal del elevador de cánula del duodenoscopio, e) la solución de desinfección o enjuague, f) las válvulas de succión o biopsia, g) la lavadora automática, h) los instrumentos accesorios (fórceps, asa de alambre, agujas de escleroterapia, termocoaguladores ... ).

La técnica más importante de desinfección es el lavado y cepillado del instrumento, sus canales y accesorios, con detergentes enzimáticos. Esta limpieza manual disminuye la población de microorganismos a 1/ 10,000 de la original Pero este grado de desinfección no es suficiente por sí solo. La desinfección adecuada requiere de una inmersión total del instrumento en un desinfectante adecuado. Cuando la limpieza y desinfección del instrumento se hacen en forma completa y cuidadosa, la vida del instrumento se prolonga y se previenen altos costos de reparación.

El tiempo de inmersión total necesario en una solución desinfectante depende de la calidad del lavado y cepillado. Con un lavado y cepillado subóptimo, se necesita una inmersión de 45 minutos, en una solución de glutaraldehido alcalino al 2%, sin surfactante, (Cidex, Johnson % Johnson, Arlington, Texas), a 25ºC de temperatura. Con lavado y cepillado adecuado, bastan 20 minutos en la misma solución, a una temperatura de 20ºC. Cuando el endoscopio se ha usado en una persona con infección <micobacteriana activa (TBC, MAI, etc.) y el lavado y cepillado han sido cuidadosos, es razonable prolongar la inmersión a 45 minutos (micobacterias son más resistente a glutaraldehido).

Es importante recordar que el rehuso de la solución de glutaraldehido produce disminución de su concentración, ya sea por dilución o por polimerización (la que disminuye el glutaraldehido libre y activo). Como es imposible predecir si el glutaraldehido ha Perdido concentración y actividad, es necesario comprobar su actividad diariamente con una cinta de prueba "Cidex Solution Test Strip". (Cidex plus y Cidex Formula 7 no se recomiendan Para desinfectar endoscopios, pues tienen surfactante, que hace el enjuague difícil).

- Otro desinfectante de eficacia demostrada es el ácido peracético al 0.2%, el cual se utiliza en un sistema cerrado automático, con requerimientos estrictos de temperatura y con un buffer y anticorrosivos (Steris). Este sistema esteriliza al endoscopio y sus accesorios en 30 minutos.

- Otras técnicas que están investigándose son: a) dióxido clorínico, b) ozono, c) vapores de peróxido de hidrógeno, d) endoscopios con cubierta estéril desechable.

Recomendaciones:

I. Endoscopios:

1. Solo personal bien entrenado debe desinfectar los endoscopios.
2. Lavado y cepillado inmediato y meticuloso de la superficie, canales y válvulas del endoscopio. Para esto se utiliza un detergente enzimático como el Enzol, Johnson & Johnson. El detergente no debe rehusares. Los cepillos deben esterilizarse diariamente; luego
3. En caso de video-endoscopios, cubrir y proteger todos los circuitos eléctricos con las "tapas" o "protectores" que el fabricante recomienda (vienen como equipo "standard" del instrumento). Si los circuitos no son cubiertos, el endoscopio será dañado por los líquidos; luego
4. Después de cada lavado y cepillado (y protección de circuitos en video-endoscopios), y antes de sumergir el endoscopio en el desinfectante, deben buscarse "fugas de aire" en el endoscopio (leak test). Endoscopios con "fuga" se dañan cuando se sumergen. Si no hay fuga, proceda con la inmersión total del instrumento.
5. Utilizar des infectantes/esteril izantes de eficacia y seguridad comprobada (glutaraidehido alcalino 2% sin surfactante, o ácido peracético al 0.2%). Probar su efectividad diariamente (Hay "test strip" Para ambos); luego
6. Sumergir completamente e irrigar todos los canales (incluyendo el elevador de cánula del duodenoscopio) por lo menos 20 minutos a 20ºC, ya sea manualmente o con lavadora automática. El sistema Steris no es capaz de esterilizar el "canal del elevador de cánula" de los duodenoscopios, por lo tanto, ese canal debe irrigarse con glutaraldehido 2% dejando la solución en el canal por 20 minutos; luego
7. El endoscopio y todos sus canales (incluyendo el del "elevador de cánula") deben enjuagarse con agua. Los canales deben secarse con aire comprimido y luego irrigarse con alcohol (etílico o isopropilico) al 70% y re-secarse con aire comprimido. La superficie del endoscopio debe frotarse con alcohol 70%; luego
8. El endoscopio debe colgarse en posición vertical para uso posterior.
9. Los endoscopios deben desinfectarse en un ambiente separado, y no en la sala de endoscopia.
10. Todos los duodenoscopios deben desinfectarse antes de su primer uso, cada día.
11. Cada procedimiento pancreático o billar requiere, de una "botella de irrigación" estéril o recién desinfectada, llena con agua estéril. La botella puede re-utilizarse en otros procedimientos no pancreatobiliares del mismo día.
12. Las botellas de irrigación deben desinfectarse por lo menos diariamente, y llenarse con agua estéril (pero cada procedimiento biliar y/o pancreático necesita otra botella estéril).
13. Las soluciones; de glutaraldehido son irritantes y tóxicas, por eso deben mantenerse en recipientes; cerrados y en habitaciones bien ventiladas. La concentración de vapores de glutaraldehido puede disminuirse usando "campanas extractoras" pero, como estos vapores son más pesados que el aire, la "toma de aire" de la campana debe estar al nivel o por debajo del nivel del recipiente de glutaraldehido.
14. Todo el personal involucrado con endoscopia debe seguir "Precauciones Universales" y estar vacunado contra la hepatitis B.
15. Como los "priones" no son destruidos por glutaraldehido, ácido peracético, ni óxido de etileno gaseoso, endoscopios u otros instrumentos reusables no deben utilizarse en pacientes con enfermedad de Creutzfeldt-Jakob.

II. Dilatadores Savary, Hurst y Maloney

1. Deben lavarse inmediatamente después de usarse con un detergente enzimático. Los dilatadores tipo Savary necesitan capillado del canal central. Después deben enjuagarse con agua; luego
2. Deben sumergirse (y el canal central debe irrigarse en Savary) con glutaraldehido alcalino 2% sin surfactante, por 20 minutos, a 201C; luego
3. Deben enjuagarse con agua y frotarse con alcohol 70% (incluyendo irrigación del canal central).
4. Es aconsejable frotar el dilatador con alcohol 70%, inmediatamente antes de cada uso.

 

III. Dilatadores neumáticos (Acalasia, TTS), asas de alambre, termocoaguladores, sobretubos.

1. Deben lavarse inmediatamente después de cada uso con un detergente enzimático; si tiene canal central, éstos deben capillarse e irrigarse. Luego deben enjuagarse con agua; luego
2. Estelizar con gas (óxido de etileno)

IV. Botellas de irrigación:

1. Lavar con detergente enzimático y enjuagar con agua; luego
2. a) Sumergir en glutaraldehido al 2% por 20 minutos a 20ºC y luego enjuagar con agua y dejar secar por drenaje, o b) Esterilizar con gas (óxido de etileno)
3. Botellas deben desinfectarse por lo menos una vez al día y antes de cada duodenoscopía.

V. Fórceps de biopsia

1. Lavar y cepillar con detergente enzimático; luego enjuagar con agua; luego
2. Limpiar con ultrasonicador; luego
3. Esterilizar con vapor (autoclave)